详细参数：

产品名称：DEAE-Sephadex A-25

外观(性状)：白色粉末

基质：Sephadex

颗粒大小：40-120μm

工作pH：2-9

总离子交换量：3-4mmol/g干胶

交换载量：1mg Thyroglobulin/mL Drained Medium；30mg HSA/mL Drained Medium；140mg α-Lactalbumin/mL Drained Medium

保存条件：室温

单位：瓶

保质期：4年

应用：利用离子交换作用，纯化低分子质量蛋白、多肽、核苷酸及巨大分子等

产品简介：DEAE-SephadexA-25(二乙基氨基乙基葡聚糖A-25)为弱碱性阴离子交换剂。用NaOH将CL-型转变为OH-型后，可吸附酸性蛋白。血清中的γ球蛋白属于中性蛋白(等电点为pH6.85-7.5)，其余均属酸性蛋白。在pH7.2-7.4的环境中，酸性蛋白均被DEAE-Sephadex A-25吸附，只有γ球蛋白不被吸附。因此，通过柱层析γ球蛋白便可在洗脱中先流出,而其他蛋白则被吸附在柱上,从而便可分离获得纯化的IgG。

实验步骤：
1. 预处理：称DEAE-Sephadex A-25(下称A-25)5克，悬于500ml蒸馏水，1小时后倾去上层细粒。按每克A-25加0.5M NaOH 15ml的比例，将A-25浸泡于0.5M NaOH中，搅匀，静置30分钟，装入布氏漏斗(垫有2层滤纸)中抽滤，并反复用蒸馏水抽洗至PH呈中性；再以0.5M HCl同上操作过程处理，最后以0.5M NaOH再处理一次。处理完后，将A-25浸泡于0.1M，pH 7.4 PB中过夜。
2. 装柱：将层析柱垂直固定于滴定铁架上，柱底垫一园尼龙纱，出水口接一乳胶或塑料管并关闭开关。将0.1M，pH7.4 PB沿玻璃棒倒入柱中至1/4高度，再倒入经预处理并以同上缓冲液调成稀糊状的A-25。待A-25凝胶沉降2-3cm厚时，启开出水口螺旋夹，控制流速1ml/分钟，同时连续倒入糊状A-50凝胶至所需高度。关闭出水口，待A-25凝胶完全沉降后，柱面放一园形滤纸片，以橡皮塞塞紧柱上口，通过插入橡皮塞之针头及所连接的乳胶或塑料管与洗脱液瓶相连接。
3. 平衡：启开出水口螺旋夹，控制流速12-14滴/分钟，使约2倍床体积的洗脱液流出。并以pH计与电导仪分别测定洗脱液及流出液之pH值与离子强度是否相同。达到一致时关闭出水口，停止平衡。
4. 加样及洗脱：启开上口橡皮塞及下口螺旋夹，使柱中液体缓慢滴出，当柱面液体与柱面相切时，立即关闭出水口，以毛细滴管沿柱壁加入样品(体积应<床体积的2％，蛋白浓度以<100mg为宜)。松开出水口螺旋夹使柱面样品缓慢进入柱内，至与柱面相切时，立即关闭下口，以少量洗脱液洗柱壁2-3次；再放开出水口，使洗液进入床柱，随后立即于柱面上加入数ml洗脱液，紧塞柱上口，使整个洗脱过程成一密闭系统。并控制流速12～14滴／分钟。
5. 收集：开始洗脱的同时就以试管进行收集。每管收集3～5ml。共收集10～15管。
6. 测蛋白：以751-G型紫外分光光度计分别测定每管OD280nm，与OD260nm，按前述公式计算各管蛋白含量。并以OD280nm为纵座标，以试管编号为横座标，绘制洗脱曲线。
7. 合并、浓缩：将洗脱峰的上坡段与下坡段各管收集液分别进行合并，以PEG(MW6000)洗缩至所需体积，加入0.02％NaN３防腐剂，于4℃保存备用。
8. A-50凝胶的再生：在柱上先以2M NaCl洗柱上的杂蛋白至流出液的OD280nm<0.02，再以蒸馏水洗去柱中盐。然后按预处理过程将A-50再处理一遍即达再生。近期用时泡于洗脱缓冲液中４℃保存；近期不用时，以无水酒精洗2次，再置50℃温箱烘干，装瓶内保存。
注意事项：
1. 柱的选择：从理论上说，只要柱足够长，就得获得理想的分辨率，但由于层析柱流速同压力梯度有关，柱长增加使流速减慢，峰变宽，分辨率降低。柱的直径增加，使液体流动的不均匀性增加，分辨率明显下降。
2. 纯化过程必须严格控制脱缓冲液的pH及离子强度。样品与A-25凝胶必须用洗脱缓冲液彻底平衡后，才能进行柱层析。
3. 所装的柱床必须表面平整，无沟流及气泡，否则应重装。
4. 洗脱过程中应严格控制流速，且勿过快。
5. 上样的体积要小，浓度不宜过高。
6. 加样及整个洗脱过程中，严防柱面变干。